miércoles, 18 de mayo de 2016

Técnicas de aplicación del Azul Brillante




El empleo de colorantes vitales (es decir, de tinciones capaces de modificar el color de los tejidos vivos produciendo un daño mínimo a sus células) en la cirugía vitreorretiniana se ha denominado cromovitrectomía. La utilidad de los colorantes vitales (CV) radica en su capacidad específica de teñir diferentes estructuras como las células o las fibras de colágeno. Los CV se han utilizado en el campo de la Oftalmología además de la cirugía vítreorretiniana, en otros campos como la cirugía de la córnea, conjuntiva, glaucoma, cataratas, estrabismo, órbita y vías lagrimales.



La principal indicación de la cromovitrectomía es la tinción de las estructuras transparentes de la interfase vitreorretiniana. La primera mención de este procedimiento se remonta a finales de los años 70 cuando Abrams mencionó la aplicación de la fluoresceína sódica en la identificación del vítreo. Desde aquel momento, no se volvió a hablar de estos procedimientos hasta el inicio del presente siglo, cuando se consideró que una mejor definición del tejido podría reducir el trauma tisular asociado (en especial sobre la capa de fibras nerviosas de la retina) tras los primeros resultados publicados por Eckardt en el pelado de la membrana limitante interna (MLI) para el tratamiento del agujero macular. A partir de este momento, la tasa de éxito en el cierre de los agujeros maculares alcanzó hasta un 96% de los casos, frente al 58 a 95% previo descrito por algunos autores. Para lograr este objetivo se utilizaron colorantes de uso intravenoso en Oftalmología (fluoresceína y verde indocianina, ICG), y se aprovecharon las propiedades de la triamcinolona para la tinción del vítreo (ya observadas tras su inyección por Peyman y posteriormente aplicadas por Burk para la tinción del vítreo prolapsado a la cámara anterior).



El pelado quirúrgico de la MLI puede lesionar la capa de fibras nerviosas (con el consiguiente defecto de campo visual descrito hasta en un 50% de los casos), y dañar el epitelio pigmentario de la retina (EPR). Los defectos campimétricos postquirúrgicos se han relacionado con el trauma quirúrgico a la papila, con el intercambio líquido-gas (por la deshidratación del tejido), con la elevación de la presión intraocular postoperatoria y con el traumatismo directo de la retina. Tanto el trauma quirúrgico como la fototoxicidad pueden producir una lesión del EPR que se manifiesta en forma de hiperpigmentación o hipofluorescencia en la AFG.



TÉCNICA DE APLICACIÓN DEL COLORANTE DURANTE LA VITRECTOMÍA



Se han descrito diferentes técnicas de tinción en la cavidad vítrea con colorantes vitales. Una de estas formas es la denominada «técnica seca» que se realiza con el ojo lleno de aire, tras la eliminación del líquido de la cavidad vítrea seguida de un intercambio líquido gas antes de la inyección del colorante. Este procedimiento plantea la ventaja de una mayor concentración de colorante sobre la retina y de evitar el contacto del mismo con el cristalino, a expensas de inducir una posible toxicidad retiniana debido a su elevada concentración.



El segundo procedimiento es el «método húmedo» que se lleva a cabo con el ojo lleno de líquido (por lo general de una solución salina balanceada) mientras se inyecta el colorante sobre la superficie de la retina. En estos casos la concentración del colorante es menor al estar diluido en el fluido de la cavidad vítrea, con el inconveniente de que el colorante se puede dispersar y teñir otras zonas de la retina o los cristaloides posteriores. Czajka y cols. Compararon ambos procedimientos en un modelo de ojos de cerdo y hallaron que el primer procedimiento se asociaba a una mayor incidencia de atrofia del EPR y degeneración de la retina externa.



Harbin y Chu han desarrollado un sistema de aplicación del colorante, el VINCE (Vitreoretinal INternal limiting membrane Color Enhancer; Dutch Ophthalmic, Zuidland, Países Bajos), que consiste en un pincel formado por una cánula de reflujo modificada de 20 G que contiene un tubo de silicona rodeado por una cánula de metal, permite pincelar el colorante directamente sobre el tejido para una mejor visualización al tiempo que se evita la tinción no controlada del EPR del agujero macular y de la retina periférica.



Para evitar el contacto del colorante con el EPR tras su paso por el agujero macular, se ha propuesto realizar la inyección lentamente, empleando dispositivos como VINCE, o colocando una burbuja de líquido sobre el agujero (perfluorocarbono líquido, sangre entera antóloga y hialuronato sódico). Se ha utilizado el perfluorocarbono líquido (PFCL) como agente protector del EPR en el agujero macular cuando se tiñe con ICG ya que son inmiscibles. Scupola et al han comunicado los resultados a 1 año protegiendo el EPR con PFCL, sin observar defectos a nivel del EPR y con una agudeza visual media final de 20/50; sin embargo, su empleo incrementa el costo de la cirugía y los tiempos quirúrgicos y es necesario aspirar completamente el PFCL para evitar la toxicidad retiniana. Lai et al tras el empleo de sangre autóloga para proteger el EPR de la ICG, observaron que se reducía el daño celular y que no se apreciaban diferencias entre los ojos tratados con sangre entera, plasma o concentrados de hematíes, sin que se apreciaran daños al tejido ni quedaran restos de ICG al cabo de 1 mes de seguimiento.





El azul brillante (BriB) conocido también como Azul Ácido o Coomassie, es un colorante aniónico del grupo del aminotriarilmetano con fórmula empírica C47H48N3S2O7Na y un peso molecular de 854 dalton. Se emplea como colorante alimenticio y se ha empleado fuera de indicación en la tinción de la cápsula y en vitrectomía y fue aprobado en la Unión Europea en 2007 como Brilliant peel (Fluoron/Geuder, Heidelberg, Alemania).







Bibliografía

MONTERO MORENO, R. M. (2010). OFTALMO.Sociedades oftalmológicas de España. Recuperado el 12 de mayo de 2016, de http://www.oftalmo.com/studium/studium2010/stud10-2/10b-04.htm


jueves, 12 de mayo de 2016

Azul Tripano

DETERMINACIÓN DE LA CONCENTRACIÓN Y VIABILIDAD CELULAR





RESUMEN

Se determinó la concentración y viabilidad de una suspensión celular (linfoma de células B). El azul tripán tiñe a las células que presentan daño en la membrana plasmática, fue utilizado para diferenciar entre células viables y no viables / teñidas con azul tripán. Se preparó una disolución 1:2 con 10 μL del cultivo y azul de tripàn. Se usó la cámara de Neubauer para contar e inferir el número de células viables, como concentración celular, expresadas en células por mililitro. El volumen celular en el cual se han contado las células resulta de multiplicar la profundidad de la cámara por el factor de dilución, la superficie de los cuadrados y el número de cuadrados contados. Se encontró a partir de las células (linfoma de células B) proporcionadas un 85.92 % de viabilidad y 580 0000 cel /mL de concentración celular.


INTRODUCCIÓN

Una suspensión celular se caracteriza por presentar un número de partículas microscópicas dispersas en un fluido. Habitualmente será necesario determinar tanto la densidad de las células en la suspensión, así como el porcentaje de éstas que son viables. Para determinar la densidad de las células se emplean diferentes técnicas, una de ellas es la cámara de contaje celular de la que existe numerosas variantes, entre ellas la cámara de Neubauer hasta equipos automáticos de contaje celular como el "Cell Coulter" de la empresa Beckman-Coulter.
La cámara de Neubauer o hemacitómetro (Figura 1), es utilizada generalmente para la cuenta de células sanguíneas como son los eritrocitos (glóbulos rojos) y linfocitos (glóbulos blancos), pero también puede ser utilizada para el conteo de otros tipos celulares. Las áreas grandes indicadas con los números 1, 2, 3 y 4 en la Figura 1 son utilizadas para contar los glóbulos blancos y el área con el número 5 es para contar los glóbulos rojos y plaquetas. Está cámara de contaje se adaptada al microscopio óptico. La cámara consta de un cubre objetos de cuarzo, con una depresión en el centro, y con una cuadricula marcada. Y con portaobjetos de un grosor mayor a los de uso común. En la parte superior del porta objetos se encuentran cuatro canales longitudinales y uno trasversal central. En la parte superior e inferior del canal trasversal están grabadas dos rejillas, las cuales están a su vez subdivididas.
El volumen celular en el cual se han contado las células resulta de multiplicar la profundidad de la cámara por el factor de dilución, la superficie de los cuadrados y el número de cuadrados contados.1
Para determinar la viabilidad celular se emplean el método de tinción con azul tripán. El azul tripán es un colorante vital que se introduce en el interior de las células que presentan ruptura o daño en la membrana plasmática. Las células que aparecen en el microscopio, de color azul, son consideradas no viables.
Linfoma de células B .Grupo heterogéneo de tumores linfoides que generalmente expresan uno o más antígenos de células B o que representan la transformación maligna de linfocitos B del sistema inmunitario.2


MATERERIALES Y MÉTODOS

Equipo: Micropipeta de 100μL (Clinipett autoclavablel), micropipeta de 10μL, Cámara de Neubauer Bright light hemacytomether (Hausser scientific), Microscopio óptico (Leica).

Material: Puntas estériles para micropipeta (azul y amarilla), Tubos Eppendorf de 1.5 mL., Azul de Tripán (sigma T8154).


Procedimiento:

Preparación de la disolución 1:2. Se tomó 100µL del cultivo celular (linfoma de células B) y se colocó en un Eppendor. En otro Eppendor se agregó 10µL de azul tripán. Se homogenizó el cultivo con una micropipeta, y a partir del él se tomó 10µL, que fueron agregados al Eppendor en donde estaba contenido el azul tripán. Se prosiguió a homogenizar la mezcla azul tripán y cultivo nuevamente. Obteniendo así una dilución 1:2 del cultivo celular (factor dilución).
Montaje en la cámara de Neubauer. En la cámara de Neubauer se colocó el cubre objetos a lo largo. Con la punta de la micropipeta dispuesta en el canal, 10 μL de la suspensión de células y colorante se dejaron fluir por debajo del cubreobjetos en la cámara hasta que el área de la cuadrícula se llenó, evitando que se derramará o que entraran burbujas en el área de conteo. Figura 2.

Observación y conteo al microscopio. Una vez preparada la cámara Neubauer se colocó sobre la platina del microscopio óptico, dejándola unos minutos en reposo para que se sedimenten las células, sin dejar secar. Se observó y contó con el objetivo 10x en los cuadrantes 1, 2, 3, y 4. Una vez terminado el conteo se limpió la cámara de Neubauer.
OBSERVACIONES Y RESULTADOS

El conteo de las células observadas en los cuadrantes 1, 2, 3 y 4 de la cámara de Neubauer se registró en la Tabla 1. Se observó células teñidas de azul / no viables (19) y células brillantes/ viables (116), de un total de 135 células contadas. En la figura 3 se observan las células (brillantes /viables y teñidas de azul/ no viables) en el cuadrante tres de la cámara de Neubauer. Se realizaron cálculos para determinar % de viabilidad y concentración celular de la muestra proporcionada (linfoma de células B), cuyo valor obtenido fue 85.92% y 580 0000 cel /mL, respectivamente.



















DISCUSIONES

Factores como la homogenización de y /o de la muestra o azul tripán, re suspensión de la muestra, exactitud y presión de los volúmenes tomados por las micropipetas, y la destreza de la persona para contar las células pueden afectan los resultados, por lo que son muy importantes estos aspectos, para obtener resultados confiables. Se consideró que los factores anteriores fueron controlados adecuadamente dentro de lo posible (calibración dudosa de las micropipetas) pero lo resultados están dentro de un rango aceptable.

CONCLUSIONES


Mediante la tinción con azul tripán, fue posible la diferenciación entre células viables/ brillantes y teñidas de azul / no viables, y así determinar el porcentaje de viabilidad celular. Con la cámara de Neubauer fue posible inferir la concentración celular. Se encontró a partir de las células (linfoma de células B) proporcionadas un 85.92 % de viabilidad y 580 0000 cel /mL de concentración celular.

BIBLIOGRAFÍA

1. Técnicas y métodos de laboratorio clínico. Gonzales de Buitrago J. 2004 Segunda edición. Ediciones Masson. Barcelona, España. Parte III, pag.278-279

2. Anatomía patológica. Steves A, Lowe J. 2001 segunda edición al español. Ediciones Harcourt, Madrid España. Capitulo 15, enfermedades de los ganglios linfáticos, Pag 310-311.

jueves, 30 de abril de 2015

Prueba de Schirmer




Es una prueba que determina si el ojo produce suficientes lágrimas para mantenerlo húmedo.

Forma en que se realiza el examen


El médico colocará una tira especial de papel dentro del párpado inferior de cada ojo, por debajo del párpado (generalmente el inferior). Ambos ojos se examinan al mismo tiempo. Antes del examen, le aplicarán gotas oftálmicas anestésicas con el fin de evitar el lagrimeo de los ojos, debido a la irritación causada por las tiras de papel.

El procedimiento exacto puede variar. La mayoría de las veces, los ojos se cierran durante 5 minutos. Cierre los ojos suavemente, ya que el hecho de frotarse los ojos o apretar al cerrarlos durante la prueba puede arrojar resultados anormales del examen.

Después de 5 minutos, el médico retira el papel y mide qué tan húmedo está.

Algunas veces, el examen se hace sin gotas anestésicas para buscar otros tipos de problemas de lagrimeo.

El examen con hebra de hilo impregnada de rojo de fenol es similar a la prueba de Schirmer, sólo que se utilizan tiras rojas de un hilo especial en lugar de las tiras de papel. No se necesitan gotas anestésicas. El examen demora 15 segundos.

Preparación para el examen


Le pedirán que se quite los lentes de contacto antes del examen.

Lo que se siente durante el examen


Algunas personas descubren que sostener el papel contra el ojo es irritante o un poco incómodo. Las gotas anestésicas a menudo pican al principio.

Razones por las que se realiza el examen


Este examen se utiliza cuando una persona presenta ojos muy secos o lagrimeo excesivo.

Valores normales


Más de 10 mm de humedad en el papel de filtro después de 5 minutos es un signo de una producción normal de lágrimas. Ambos ojos normalmente secretan la misma cantidad de lágrimas.

Significado de los resultados anormales


Los ojos secos pueden ser el resultado de:
Envejecimiento.
Blefaritis.
Cambios de clima.
Úlceras e infecciones corneales.
Infecciones del ojo (por ejemplo, conjuntivitis).
Corrección de la visión con láser.
Leucemia.
Linfoma.
Artritis reumatoidea.
Cirugía facial o de párpados previa.
Síndrome de Sjogren.
Deficiencia de vitamina A.

Riesgos


No existen riesgos con la realización de esta prueba.

Consideraciones


No se frote los ojos durante por lo menos 30 minutos después del examen ni use lentes de contacto durante por lo menos 2 horas después del procedimiento.

Aunque la prueba de Schirmer ha estado disponible por más de 100 años, varios estudios muestran que no identifica adecuadamente a un grupo grande de pacientes con ojos secos. Se están desarrollando pruebas más nuevas y mejores, una de las cuales mide una molécula denominada lactoferrina. Los pacientes con baja producción de lágrimas y ojos secos tienen niveles bajos de esta molécula.

Otra prueba mide la osmolaridad de las lágrimas o qué tan concentradas están éstas. A mayor osmolaridad, mayor es la probabilidad de que usted tenga ojos secos.

Nombres alternativos


Examen de lágrimas; Examen del lagrimeo; Prueba del ojo seco; Prueba secreción basal

Referencias


American Academy of Ophthalmology Preferred Practice Patterns Committee. Preferred Practice Pattern Guidelines. Comprehensive Adult Medical Eye Evaluation. Available at http://one.aao.org/CE/PracticeGuidelines/PPP_Content.aspx?cid=64e9df91-dd10-4317-8142-6a87eee7f517.Accessed February 26, 2013.

American Academy of Ophthalmology Cornea/External Disease Panel. Preferred Practice Pattern Guidelines. Dry Eye Syndrome. 2008. Updated September 2011. Available at http://one.aao.org/CE/PracticeGuidelines/PPP_Content.aspx?cid=127dbdce-4271-471a-b6d9-464b9d15b748.Accessed February 26, 2013.

Lemp MA, Foulks GN. Diagnosis and management of dry eye disease. In: Tasman W, Jaeger EA, eds.Duane's Ophthalmology


Manchas blancas en las pupilas



Es una afección que hace que la pupila del ojo luzca blanca en lugar de color negro.

Consideraciones


La pupila del ojo humano normalmente es negra. En las fotografías con flash, la pupila puede aparecer roja. Esto también es denominado el "reflejo rojo" por los médicos y es normal.

Algunas veces, la pupila del ojo puede lucir blanca o el reflejo rojo normal puede aparecer blanco. Esto no es una condición normal y es necesario acudir de inmediato al oftalmólogo.

Hay muchas causas diferentes para que se presente una pupila blanca o el reflejo blanco. Otras afecciones también pueden parecerse a una pupila blanca. Si la córnea, que normalmente es clara, se torna opaca, puede lucir similar a una pupila blanca. Aunque las causas de la córnea blanca u opaca son diferentes a las de la pupila blanca o el reflejo blanco, estos problemas también requieren atención médica inmediata.

Las cataratas también pueden hacer que la pupila aparezca blanca.

Causas

Enfermedad de Coats (retinopatía exudativa)
Coloboma
Catarata congénita: puede ser hereditaria o el resultado de otras afecciones como rubéola congénita, galactosemia, fibroplasia retrolenticular
Vítreo primario hiperplásico persistente
Retinoblastoma
Toxocara canis (infección causada por un parásito)
Uveítis

Cuidados en el hogar


La mayoría de las causas de la pupila blanca causarán disminución en la visión. Esto a menudo puede ocurrir antes de que la pupila aparezca de este color.

La detección de una pupila blanca es especialmente importante en los bebés. Los bebés son incapaces de comunicarle a los demás que su visión está disminuida. También es más difícil medir la visión de un bebé durante un examen de los ojos.


Si observa una pupila blanca, solicite una cita de inmediato con el médico. Los exámenes del niño sano rutinariamente buscan una pupila blanca en los niños. En caso de que un niño desarrolle pupila blanca o córnea opaca, se requiere atención médica inmediata, preferiblemente con un oftalmólogo.

Cuándo contactar a un profesional médico


Consulte con el médico si nota cualquier cambio de color en la pupila o córnea del ojo.

Lo que se puede esperar en el consultorio médico


El médico llevará a cabo un examen físico y hará preguntas acerca de los síntomas y la historia clínica.

El examen físico incluye una evaluación detallada del ojo.

Se pueden realizar los siguientes exámenes:
Oftalmoscopia
Examen con lámpara de hendidura
Examen ocular estándar
Examen de agudeza visual

Otros exámenes que se pueden hacer son: resonancia magnética o tomografía computarizada de la cabeza.

Nombres alternativos


Leucocoria

Referencias


Shields, C. Retinoblastoma. In: Tasman W, Jaeger EA, eds.Duane's Ophthalmology

Yanoff M, Cameron D. Disease of the visual system. In: Goldman L, Schafer AI, eds.Cecil Medicine

Olitsky SE, Hug D, Plummer LS, Stass-Isern M. Examination of the eye. In: Kliegman RM, Behrman RE, Jenson HB, Stanton BF, eds.Nelson Textbook of Pediatrics

Tinción del ojo con fluoresceína


Se trata de un examen en el que se utiliza un tinte de color anaranjado (fluoresceína) y una luz azul para detectar la presencia de cuerpos extraños en el ojo. Este examen también puede detectar daño a la córnea, que es la superficie externa del ojo.

Forma en que se realiza el examen

Se coloca un papel secante que contiene el tinte haciendo contacto con la superficie del ojo. Se pide al paciente que parpadee, ya que este movimiento esparce el tinte y reviste la película lagrimal que cubre la superficie de la córnea. La película lagrimal contiene agua, aceite y moco para proteger y lubricar el ojo.
Luego, el médico proyecta una luz azul sobre el ojo. Cualquier problema sobre la superficie de la córnea estará teñido por el tinte y aparecerá de color verde bajo la luz azul.
El médico puede determinar la localización y probable causa del problema de córnea, según el tamaño, la ubicación y la forma de la mancha.

Preparación para el examen

Será necesario que se quite las gafas o los lentes de contacto antes del examen.

Lo que se siente durante el examen

Si los ojos están extremadamente resecos, el papel secante puede sentirse un poco áspero. El tinte puede ocasionar una sensación leve y breve de picazón.

Razones por las que se realiza el examen

Este examen sirve para encontrar raspaduras superficiales u otros problemas con la superficie de la córnea. También puede ayudar a detectar cuerpos extraños en la superficie del ojo. Asimismo, este examen se puede utilizar después de la prescripción de lentes de contacto para determinar si hay irritación de la superficie de la córnea.

Valores normales

Si el resultado del examen es normal, el tinte o colorante permanece en la película lagrimal sobre la superficie del ojo y no se adhiere al ojo en sí.

Significado de los resultados anormales

  • Producción anormal de lágrimas (resequedad del ojo)
  • Abrasión corneal (un rasguño o rayón en la superficie de la córnea)
  • Cuerpos extraños, como pestañas o polvo (ver cuerpo extraño en el ojo)
  • Infección
  • Lesión o traumatismo
  • Resequedad ocular seria asociada con artritis (queratoconjuntivitis seca)
Afecciones adicionales bajo las cuales se puede efectuar el examen:

Riesgos

Si la fluoresceína entra en contacto con la superficie cutánea, puede presentarse una decoloración leve y breve.

Consideraciones

Este examen es muy útil para detectar lesiones o anomalías de la superficie de la córnea

Referencias

Knoop KJ, Dennis WR, Hedges JR. Ophthalmologic procedures. In: Roberts JR, Hedges JR, eds.Clinical Procedures in Emergency Medicine

Lentes Intraoculares


¿Cómo pueden ser las lentes intraoculares?

Las lentes intraoculares se pueden clasificar según el tipo de material, en rígidos o flexibles.

Los lentes intraoculares rígidos están hechos en polimetilmetacrilato. En raras ocasiones son utilizados en la actualidad, ya que, como estos lentes miden entre 5 y 7 milímetros de diámetro, cuando se utilizan en la facoemulsificación, es necesario agrandar la incisión original de 2 mm y algunas veces se deben colocar puntos para cerrar el ojo.

Con el avance tecnológico, se desarrollaron los lentes intraoculares flexibles (también llamados plegables). En las figuras 10 a-e se muestra cómo se implantan estas lentes. Estos lentes casi siempre se introducen enrrollados con inyectores por una incisión de tan sólo 2 mm. Una vez dentro del ojo, se desenrollan, hasta alcanzar un diámetro de 6 mm.

Como la incisión no se amplía, la herida es autosellante y no son necesarios los puntos. Si al final de la operación se sospecha que la herida no es autosellante, se le coloca un punto para asegurar el cierre hermético de la operación. Esto no es contraproducente en cuanto a los resultados visuales.


Las lentes intraoculares también se clasifican según la capacidad de enfocar a diferentes distancias en monofocales (enfocan en una sola distancia) o lentes para corregir presbicia (los que a su vez pueden ser multifocales o acomodativos).

Tanto los lentes monofocales como multifocales presentan versiones tóricas (que corrigen astigmatismo). Estas versiones son muy recomendables en pacientes con astigmatismo corneal. Como sucede con las lentes tóricas en anteojos y lentes de contacto, estas lentes intraoculares deben quedar implantadas con una orientación determinada por el astigmatismo corneal para mantener su efecto. En caso de no ser así, puede ser necesaria una reintervención para orientarlas adecuadamente.

Después de operado es muy probable que se maneje sin anteojos para las tareas habituales, pero podría necesitar un anteojo de pequeño aumento para alcanzar su máxima visión, de uso ocasional.

El cristalino natural tiene la posibilidad de cambiar su poder para enfocar objetos a distintas distancias. Hacia los 40 años, la elasticidad del cristalino comienza a disminuir y paulatinamente se pierde la capacidad de enfoque, siendo necesario el uso de anteojos para leer.

Como el poder de la lente intraocular monofocal no es variable, en general se elige el poder necesario para que el paciente vea bien de lejos–aunque a veces sea útil un anteojo para ver detalles a la distancia-.. Por lo tanto, para las actividades de cerca (como leer o coser), es muy probable que necesite anteojos de lectura. En caso de que haya una astigmatismo corneal, para lograr el objetivo de ver bien de lejos la lente intraocular debe ser tórica, pues con lentes monofocales convencionales el paciente necesitará anteojos de lejos y de cerca.

La Administración de Alimentos y Drogas de Estados Unidos (Food and Drugs Administration, FDA) aprobó la utilización de lentes intraoculares multifocales (figura 11) en la facoemulsificación para que el paciente logre la visualización de imágenes en diferentes distancias, logrando un mayor nivel de independencia del uso de los anteojos. Este alto nivel de independencia a los anteojos, sumado a la alta seguridad que presenta la facoemulsificación, permite que el implante de la lente intraocular multifocal sea una alternativa más para la corrección quirúrgica de la presbicia.

BIBliografía

http://www.institutodelavision.com/


Láser Femtosegundo



¿Qué es?

El láser femtosegundo es un instrumento con longitud de onda infrarroja de gran precisión, que trabaja en millonésimas de segundo. Una de sus características distintivas es su reversibilidad, ya que no produce corte de los tejidos, sino que los separa colocando mínimas dosis de energía para producir una disrupción entre las células. La otra característica es la extrema precisión sin corte ni transferencia de calor a las células adyacentes, ya que utiliza la luz infrarroja para separar moléculas.
El láser de femtosegundo reproduce con una precisión micrométrica las microincisiones previamente diseñadas por el cirujano en el ordenador, al que el láser está conectado, y por tanto no depende de forma tan directa de la destreza manual del oftalmólogo, aumentando la seguridad, rapidez y precisión de la cirugía.

¿En qué casos se realiza?

Una de sus versiones se utiliza desde hace unos años en patologías refractivas (miopía, hipermetropía,astigmatismo) y, más recientemente, en algunos casos de trasplante de córnea.
El IMO incorporó en 2012 esta nueva técnica para la cirugía de la catarata, en casos de implantación de lentes especiales para la presbicia y también para perfeccionar los cortes adicionales en la córnea que en ocasiones se llevan a cabo tras la cirugía de la catarata para revenir o disminuir el astigmatismo.
La introducción de este láser supone una revolución en el procedimiento quirúrgico de la catarata, ya que modifica y aporta algunas ventajas significativas a la cirugía que viene utilizándose desde 1990: lafacoemulsificación por ultrasonidos.
Aunque esta cirugía ha avanzado mucho en los últimos años, con incisiones cada vez más pequeñas y liberación de la energía más controlada y eficaz, sigue llevándose a cabo de forma manual, lo que precisa de la habilidad del cirujano, especialmente en algunos pasos del procedimiento.
El nuevo sistema sustituye la capsulorrexis por una casi perfecta capsulotomía, que asegura la precisión y forma circular de la cápsula extraída y dobla la resistencia de los bordes de dicha cápsula, donde el cirujano coloca la lente artificial que sustituye al cristalino. Esto permite que la lente artificial quede mejor centrada y más ajustada, obteniendo un mejor resultado refractivo.
El nuevo mecanismo ablanda la catarata, permite realizar incisiones mucho más precisas, mejora la herida reduciendo el riesgo de infección, perfecciona el posicionamiento de la lente intraocular y hace más previsible la corrección del astigmatismo asociada a la cirugía de la catarata. En consecuencia, ofrece mejores resultados refractivos, aumenta la seguridad de la intervención y estandariza el procedimiento.
El nuevo láser permitirá aumentar del 50% actual al 80% la eficacia de las lentes especiales para presbicia implantadas en cirugía de catarata.

Exámenes previos

Exploración oftalmológica completa.

Antes de la intervención

Una de sus características distintivas es su reversibilidad, ya que no produce corte de los tejidos, sino que los separa colocando mínimas dosis de energía para producir una disrupción entre las células.

Durante la intervención

Es una cirugía mucho más precisa, ofrece mejores resultados refractivos, aumenta la seguridad de la intervención y estandariza el procedimiento.
Bibliografía
http://www.imo.es/